Saturday, June 11, 2016

La Composición química del follaje - Monografias

  1. Desarrollo
  2. Bibliografía

1.- INTRODUCCIÓN

"El árbol, es una gran máquina que almacena energía y la mayor parte de los elementos esenciales para la vida" (Johnson, H., 1996). Alrededor del 80% de la diversidad biológica subsiste en las regiones tropicales y subtropicales de Asia, Africa y América Latina (Pinzón, R., 1996). Cuba, dada su ubicación geográfica y su clima, posee una flora arbórea muy rica, la que se encuentra poco o prácticamente sin explotar.

Grandes volúmenes de follaje en la actualidad son considerados residuos y que contienen una gama de sustancias significativamente complejas y ricas en componentes con actividad biológica, que podrían ser utilizados en la obtención de productos para la medicina y la alimentación animal, darían un valor agregado a los precios de la madera en forma aserrada. Estos residuos que se acumulan en el bosque después del aprovechamiento forestal ocasionan un importante impacto ambiental, al crear un medio favorable para la propagación de plagas y enfermedades dañinas tanto a la flora como a la fauna, además de ser un material combustible con riesgo en la aparición y propagación de incendios; sin embargo la utilización de estos residuos para la obtención de productos con actividad biológica, proporciona beneficios económicos, sociales y ambientales.

Palabras claves: eucalipto, pino, composición química, follaje, celulosa, , lignina, , extractivos

2.- DESARROLLO

2.1.1- Composición química del follaje.

La composición química del follaje varía en dependencia de diferentes factores como: la especie, la época del año, las condiciones de crecimiento, los factores edafoclimáticos, los tratamientos silviculturales y el sitio, e incluso durante las horas del día (Polis, O., 1986) lo cual está relacionada con la actividad fotosintética, máxima en momentos de mayor iluminación y respiración. Todo ello facilita los procesos de formación y degradación de las sustancias biológicamente activas en las plantas (Taiz, L., 1998).

El estudio de la caracterización química del follaje verde nos brinda una información de la composición química de esta materia prima con perspectiva industrial.

Para este estudio algunos autores dividen las sustancias químicas contenidas en el follaje en diferentes grupos: proteínas, carbohidratos, lípidos, compuestos fenólicos, vitaminas, ácidos orgánicos y sustancias minerales (Polis, O., 1986; Yagodin, V. I., 1981).

Los contenidos de proteínas varían en el follaje para diferentes especies y géneros, en el de Picea abies (abeto) oscilan entre 9,1% y 9,8% (Kolodidinskaia, L. A., 1982), mientras que en el Pinus silvestris entre 9,4% y 11,8% (Polis, O., 1986) y en P. caribaea Morelet de 6,1% según Leyva, B. (1990).

La celulosa se encuentra dentro del grupo de carbohidratos de alto peso molecular. Sus contenidos varían de una a otra especie. Smite, L. (1989) encontró valores de 29,1% y 27,9% en acículas y brotes, respectivamente, de la fracción foliar de Pinus pallasiana, resultados ligeramente inferiores se plantean para P. caribaea Morelet de 21,03% (Díaz, S., 1998).

Los lípidos son las sustancias orgánicas insolubles en agua que pueden extraerse de las células y de los tejidos mediante disolventes de baja polaridad (Lehninger, A. L., 1981). Se han publicado diferentes trabajos donde se plantean distintos contenidos de lípidos en el follaje de especies de coníferas. Weichun, Z. (1989) señala porcentajes de lípidos en follaje de pino de 9,8%; Kolodinskaia, L. A. (1982) destaca valores de 9,8% en el Picea abies (abeto); Polis, O. (1986) en Pinus silvestres se refiere a valores que oscilan en los límites de 9,3% y 14,8%; Leyva, B. (1990) y Díaz, S. (1998), para Pinus caribaea Morelet obtienen valores de 5,5% y 14,9%.

Los compuestos fenólicos representan un grupo amplio de sustancias orgánicas, muy heterogéneas de acuerdo a su composición y estructura química. Las acículas de Pinus silvestris contienen 15,6% de lignina, según Polis, O. (1986), valores diferentes se presentan en el Pinus silvestris y Picea abies (abeto) con 21,3% y 30,8%, respectivamente (Kolodiskaia, L. A., 1984); mientras que en Pinus caribaea Morelet se observan valores de 25,93% y 28,42% para el Pinus tropicalis Morelet (Díaz, S., 1998).

El grupo de vitaminas en el follaje verde determina gran parte de su actividad biológica y la de los productos que se obtienen de él, dentro de las que se encuentran las vitaminas E, K, C, B1, B2, B6, entre otras. Los contenidos de las vitaminas presentes en el follaje varían entre géneros y especies, encontrando contenidos de vitamina C de hasta 711 mg/%, vitamina E 36,4 mg/% (Repiax, C. M., 1988).

Las sustancias minerales expresadas como cenizas, contenidas en las hojas, son mayores que en las contenidas en la madera. Muchos de estos minerales se encuentran combinados con compuestos orgánicos como sales de oxalatos, fosfatos silicatos, etc., desempeñando un papel fisiológico en las plantas. En el follaje, existen contenidos mínimos para acículas de pino de 2,02% y máximos de 3,48% según Yagodin, V. I. (1981); valores de 3,6% para el Picea abies (abeto) fueron obtenidos por Kolodinskaia, L. A. (1982); en P. tropicalis Morelet y P. caribaea Morelet de 3,56% y 2,82% (Díaz, S., 1998).

Las sustancias minerales o compuestos inorgánicos varían con la especie, en árboles de una misma especie, con la edad, fertilidad del suelo y la parte del árbol que se estudie. Valores superiores que en la madera pueden encontrarse en las hojas, corteza, ramas y raíces. Es común encontrar diferencias en los contenidos de minerales en las coníferas y las latifolias (Carballo, L. R., 1990).

2.1.2- Sustancias extraíbles del follaje verde.

La clasificación química de las sustancias extraíbles con actividad biológica presentes en el follaje fue realizada por Yagodin, V. I. (1989) dividiendo estas en tres grandes grupos: sustancias solubles en solventes de baja polaridad, sustancias solubles en agua a 95ºC y sustancias poco solubles en solventes de baja polaridad y agua a 95ºC.

Las sustancias extraíbles en solventes de baja polaridad varían en cuanto a su cantidad y composición, según el disolvente que se utilice para su extracción. La fracción lipídica obtenida cuando se utiliza bencina como disolvente ha demostrado la presencia de aceites esenciales, pigmentos verdes (clorofila, feofitina, clorofilida, feoforbidas), carotenoides (b -caroteno, a -caroteno, luteína), vitaminas liposolubles (vitaminas D, E, K y F), lípidos neutrales (hidrocarburos, alcoholes, aldehídos, cetonas, ácidos grasos saturados y no saturados, ceras, ácidos resinosos, esterinas esenciales, glicéridos, fosfolípidos, glicolípidos (fitoglicolípidos, -sitosterina) y sustancias minerales según Yagodin, V. I. (1989b); Voipio, R. (1990); Buell, P. (1994) y Díaz, S. (1998).

Las sustancias solubles en agua a 95ºC están compuestas por vitaminas hidrosolubles, taninos, fenoles, flavonoides, sustancias nitrogenadas, carbohidratos y sustancias minerales (Yagodin, V. I., 1989b). Los componentes de la pared celular están representados por la celulosa, la lignina y las hemicelulosas.

2.1.3- Sustancias solubles en solvente de baja polaridad.

Las sustancias solubles en solventes de baja polaridad incluyen los aceites esenciales, de los cuales se pueden obtener más de cien productos químicos diferentes. Los principales grupos funcionales presentes en los aceites esenciales son los grupos: hidroxilos, ésteres, carbonilos y fenólicos (Brito, G., 1995).

Los aceites esenciales son el concentrado de compuestos orgánicos con aroma presentes en las hojas, flores, semillas, corteza y raíz de las plantas. Ellos se evaporan al contacto con el aire y son conocidos también como aceites volátiles, tienen un olor muy fuerte y generalmente, mejor olor en disolución (Ciesla, W. M., 1998). Los aceites esenciales de los árboles son obtenidos comúnmente por un proceso de destilación a vapor, aplicado a la resina, a la madera o follaje y a las ramas terminales.

La composición de aceites esenciales varía grandemente con la especie y árboles de la misma especie y ha sido ampliamente estudiada (Sigt, A. K., 1994; Li J., 1995; Bignell, C. M., 1997; Chesowa, E. H., 1997; Mondachirou, M., 1999). El contenido de aceites esenciales en las hojas de E. citriodora Hook varía de 0,5- 2,0% (Dayal, R., 1979); para otras especies de Eucalyptus se han encontrado valores en hojas adultas de 1,4 - 5,1% y en hojas jóvenes de 0,8 - 5,3% (Li-H., 1995); en coníferas se han encontrado porcentajes de 0,32% en P. silvestris y 0,81% en Picea abies (abeto) (Yagodin, V. I., 1981); en P. caribaea Morelet de 0,35 - 0,06% (Guyat, M. A., 1989).

Los carotenoides constituyen uno de los grupos más importantes de pigmentos naturales. Son tetraterpenos compuestos de 40 átomos de carbono, formados por la condensación de ocho unidades de isopreno. Ellos incluyen hidrocarburos (carotenos), así como sus derivados oxigenados (xantofilas) (Meller, E. V., 1967). Los más abundantes son el -caroteno y sus productos de oxidación: luteína, violaxantina y neoxantina, los que presentan una absorción muy intensa en la región azul del espectro (Guardiola, J. L., 1995).

Los carotenoides de las hojas se encuentran junto con los pigmentos verdes plastidios-cloroplastos, en las plantas el representante más abundante es el -caroteno. Su contenido en el follaje de Pinus silvestris es de 17,5 mg/% y en abeto (Picea abies) 15 mg/% (Polis, O., 1986); valores semejantes para P. caribaea Morelet de 18,5 mg/% y P. tropicalis Morelet de 11,7mg/% fueron planteados por Díaz, S. (1998).

En las hojas de las plantas es donde se realiza la fotosíntesis, debido a la captación de energía luminosa con intervención de la clorofila a, junto con una cantidad menor de clorofila b. Todas las formas de clorofila tienen la misma estructura de porfirina con los anillos pirrólicos unidos por sus átomos de Nitrógeno a un átomo de Magnesio que ocupa la posición central de la molécula, un quinto anillo, constituido únicamente por átomos de carbono, el grupo propanoico en posición 7 esterificado con una molécula de fitol, siendo este un terpenoide de 20 átomos de carbono. La clorofila a tiene un grupo metilo en posición tres, mientras que la clorofila b presenta en esta posición un grupo aldehído (Yagodin, V. I., 1981; Guardiola, J. L., 1995).

El máximo de absorción de la clorofila b en disolución de éter etílico es a una longitud de onda en 642 nm y la clorofila a en 660 nm (Bachanova, H. V., 1964; Kalenin, F. L., 1971) citados por Yagodin, V. I. (1981) y Guardiola, J. L. (1995).

Las clorofilas son estables en medio alcalino, pero se transforman en presencia de ácidos débiles, lo que determina la separación del Magnesio de la molécula, convirtiéndose en feofitina (Lama, E., 1986). Los espectros infrarrojos y de masa de los derivados de clorofila obtenidos en el proceso de extracción del follaje de pino demostraron alto grado de oxidación (Loventale, V., 1989).

Otro grupo de sustancias lipídicas con amplia actividad fisiológica lo constituyen las vitaminas (A, D, E y F). La vitamina A se forma en el organismo de los animales a partir del -caroteno, la vitamina E pertenece a los derivados del tocol y tocotrienol, siendo el -tocoferol el de mayor actividad biolgica; la vitamina K est ampliamente difundida en la naturaleza, representada por dos grupos de quinonas: filoquinonas y menadiona; la vitamina D, cuya principal función es el transporte de iones Ca2+ y PO43 a través de las membranas biológicas, y la vitamina F, a la cual pertenecen los ácidos grasos esenciales (Yagodin, V. I., 1981; Benjamin, G., 1997; Tyman, J. H. P., 1997).

Los lípidos neutrales incluyen los hidrocarburos, éteres, ceras, glicéridos, alcoholes grasos superiores, aldehídos, cetonas, quinonas, ácidos resinosos y otros.

Las ceras son ésteres compuestos de ácidos grasos con alcoholes saturados no ramificados con un número par de átomos de carbono (24 - 26), contienen además ácidos grasos libres, alcoholes, hidrocarburos y cetonas de alta masa molecular.

Las ceras del follaje de Picea abies (abeto) son ésteres compuestos de ácidos palmítico, oxipalmítico y esteáricos y de los alcoholes: cetílicos y cerílicos. En forma de ésteres se han encontrado los ácidos abiéticos y oleico y también esterinas (Solodki, F. T., Agranat, A. L., 1956), citados por Yagodin, V. I. (1981).

En las ceras solubles en hexano de hojas juveniles y adultas de Eucalyptus fueron identificados hidrocarburos de cadena larga, aldehídos, alcoholes, ésteres, triterpenos y beta dicetonas de cadena larga, siendo estas últimas, los componentes mejor representados en la cera. Se ha encontrado que las ceras de las hojas jóvenes y adultas son semejantes, así como una relativa estabilidad ontogenética y una clara diferenciación por las especies, siendo ellas un indicador taxonómico y filogenético para el género Eucalyptus (Li - H., 1997).

Los ácidos grasos saturados presentan una cadena lineal de átomos de carbono CH3 - (CH2)n - COOH. En el follaje verde de coníferas se han observado los ácidos: laurílico (C11H23COOH), mirístico (C13H27COOH), palmítico (C15H31COOH), araquídico (C19H39COOH), behénico (C21H43COOH), lignocérico (C23H47COOH) (Yagodin, V. I., 1981; Díaz, S., 1998).

Dentro del grupo de ácidos grasos no saturados se encuentran: oleico (C18H34O2), linoleico (C18H32O2) y linolénico (C18H30O2), presentes en el follaje de pino (Yagodin, V. I., 1981; Kolodinskaia, L. A.,1984; Buell, P., 1994).

Los ácidos resinosos en el follaje están representados por los ácidos pimárico, sandarocopimárico, isopimárico, dihidroabiético y neoabiético, los cuales están contenidos en un 42,7% y 59,3% en los ácidos libres del follaje de Picea abies (abeto) y P. silvestris, respectivamente (Pensar, G., 1972) citado por Yagodin, V. I., 1981.

2.1.4- Sustancias solubles en agua a temperatura de 95ºC.

Las sustancias solubles en agua a temperatura de 95ºC incluyen diferentes clases de compuestos: vitaminas hidrosolubles, compuestos nitrogenados, ácidos orgánicos, sustancias fenólicas y carbohidratos.

Dentro del grupo de sustancias extraíbles en agua a 95ºC se encuentran: el ácido ascórbico (Vitamina C), su contenido en el follaje de pino es (150 - 250 mg/%) según Yagodin,V. I. (1981), la tiamina con un contenido de 1,9 mg/% en pino y 0,8 mg/% en Picea abies (abeto) (Fragina, A. I., Chermomorsky, C. A., 1969). El follaje de pino contiene 0,5 mg y el de abeto 0,7 mg en 100 g de masa seca de riboflavina (vitamina B2) (Fragina, A. I., 1969).

Los compuestos fenólicos son el grupo de sustancias aromáticas que contienen hidroxifenol libre o enlazado y que se encuentran fundamentalmente en el reino vegetal. Ellos se dividen en benzoles monoxiderivados y dioxiderivados del tipo pirocatecol, hidroquinona y resorcinol. Dentro de los trioxiderivados se encuentran los compuestos del tipo pirogalol y muy escaso del tipo oxihidroquinona.

Los compuestos fenoles simples incluyen a los derivados oxibenzoles: benzofenol, xantonas y estilbeno.

Los flavonoides son sustancias fenólicas fácilmente oxidables, se clasifican en: flavonas, flavonoles e isoflavonas (Lama, E., 1986).

Las auronas y chalconas pueden isomerizarse en flavononas. También dentro de los flavonoides se encuentran las catequinas. Las leucoantocianinas se diferencian de las catequinas en un grupo OH, ambas son inestables y se oxidan fácilmente.

Las antocianinas se encuentran ampliamente distribuidas en las plantas superiores, al hidrolizarse originan un azúcar y un aglicón llamado antocianidina (Lama, E., 1986).

Las hojas de Eucalyptus son más ricas en flavonoides que la madera y la corteza, siendo los más abundantes la quercitina y los glicósidos de quercitina, según (Elkey, 1966); (Hillis, 1966) y (Bankef, 1976) citados por Conde, E. (1996).

Las sustancias tánicas son fenoles que se clasifican en dos grupos en dependencia de su composición química: taninos hidrolizables y taninos no hidrolizables o condensados (Pan, H., 1995). Los primeros son glicósidos del ácido digálico.

Los galotaninos son ésteres del ácido gálico o de su dímero, el ácido elágico, que son los más importantes dentro de este grupo. (Marmer, W. N., 1996). Ellos pueden ser hidrolizados por ácidos, bases o enzimas.

Los taninos del segundo grupo son considerados derivados del catecol, pueden formar polímeros y estar condensados, por lo que no son hidrolizables, generalmente son compuestos de alta masa molecular y contienen un número suficientemente alto de grupos hidroxilos capaces de formar uniones efectivas entre proteínas y otras macromoléculas.

En las hojas de E. camaldulensis, E. globullus y E. rudis han sido estudiado los polifenoles, el aldehído fenólico, vainillina, el ácido fenólico, protocatequinas y ácido elágico, algunos glicósidos flavonoles, algunos elagitaninos, flavonoides y flavononas fueron identificados por Conde, E. (1997) y Cadahía, E. (1997).

2.1.5- Componentes de la pared celular.

A este grupo de sustancias corresponden los polisacáridos y la lignina.

La celulosa es la sustancia química más importante y el componente principal de la pared celular, (Fengel, D., 1984; Echevenique, R., 1993) es un homopolímero lineal de unidades de anhidro b - (+) anhidro D- glucopiranosa con uniones - 1- 4 glicosdica. La fibra de la celulosa tiene una estructura muy firme y poco sensible a la degradacin (Guardiola, J. L., 1995).

Los contenidos de celulosa de la madera de latifolias son del 40 - 60 %, mientras que los de las coníferas es 40 45%. En el follaje de Pinus caribaea Morelet antes de ser extraído es de 21,03% y después del tratamiento con bencina es de 21,11 - 21,50% (Díaz, S., 1998), existiendo pocos estudios sobre los contenidos de celulosa en el follaje de especies de eucaliptos.

La lignina es un polímero aromático, heterogéneo, ramificado, de alta masa molecular, compuesta por unidades de fenilpropano que contienen grupos fenólicos, grupos carbonilos, hidroxilos, carboxilos y grupos metoxilos. Se clasifican en ligninas de madera de coníferas y ligninas de madera de latifolias, las de coníferas presentan ligninas del tipo G - H con 85 - 90% de unidades aromáticas de guayacil, mientras que la madera de las latifolias presenta ligninas del tipo guayacilo siringilo (G:S) en razón 1:5 aproximadamente. La estructura y composición de la lignina en el follaje ha sido poco conocida (Carballo, L. R., 1990).

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Autor:

Dra. Elena Cordero Machado

Dr. Uvaldo Orea Igarza

Profesores Investigadores del Centro de Estudios Forestales y Profesores del Departamento de Química de la Facultad de Forestal y Agronomía de la Universidad de Pinar del Río, Cuba.


Friday, June 10, 2016

Acidos carboxilicos - es.slideshare.net

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Thursday, June 9, 2016

Acides gras, triglycérides

French


English



Lipides, Acides gras

Lipids, Fatty acids


Acides gras, triglycérides. Exercice 1 (Réponse). Déterminer la formule brute et indiquer le nom d'un acide gras de 1/ masse molaire égale à 280 g et 2/ un pourcentage en oxygène égal à 11,51% .
Acides gras, triglycérides. Exercice 2 (Réponse). Chercher la formule brute et indiquer le nom d'un acide gras saturé dans les deux situations suivantes:

- Acide gras de masse molaire égale à 284 g.
- Acide gras dont le pourcentage en oxygène est 12,5%.


Acides gras, triglycérides. Exercice 3, (Réponse). Représenter le tronc commun à tous les triglycérides. et donner la représentation semi-développée des trois triglycérides suivants:
-          Trioctadécanoyl glycérol.
-          Tri hexadéca 9 ène oyl glycérol.
-          1,3 dioctadécen 9 oyl 2 hexadécanoyl glycérol.

Ecrire la formule brute et calculer la masse molaire des trois triglycérides ci dessus.


Acides gras, triglycérides. Exercice 4, (Réponse). Un triglycéride homogène a une masse molaire égale à 890 g. Déterminer la nature (nom et formule brute) de cet acide gras.

Acides gras, triglycérides. Exercice 5, (Réponse). Un triglycéride homogène contient 11,91% d'oxygène. Déterminer la formule et le nom de cet cet acide gras.


Acides gras, triglycérides. Exercice 6, (Réponse)

- Calculer l'indice d'iode de la trioléine. L'acide oléique est l'acide octadéc 9 ène oïque

- Une huile végétale contient 30% de trioléine, 60% de tripalmitine et 10% de tristéarine. Calculer son indice d'iode sachant que l'acide palmitique est l'acide hexadécanoïque et l'acide stéarique est l'acide octadécanoïque.


Acides gras, triglycérides. Exercice 7, (Réponse). Un homogénat tissulaire est soumis à une chromatographie sur couche mince de gel de silice utilisant une phase mobile constituée d'un mélange d'hexane-éther éthylique-acide acétique. Parmi les lipides identifiés sur le chromatogramme on note des acides gras, Monoglycérides, Diglycérides, Triglycérides, Cholestérol libre, Cholestérol estérifié et Phospholipides. Shématiser les résultats de la séparation chromatographique.

Acides gras, triglycérides. Exercice 8, (Réponse).Soit le lipide : 1-oléyl-2-linoléyl-phosphatidyl-glycérol (OLP)

- a/ Ecrire la structure développée du lipide OLP.
- b/ Calculer son indice de saponification et son indice d'iode.
- c/ Que donne l'hydrolyse de OLP par la phospholipase C ?
On donne: KOH = 56, H3PO4 = 98 et I=127.

Acides gras, triglycérides. Exercice 9, (Réponse). Parmi ces lipides (A, B, C, D) choisir celui qui présente l'indice d'iode le plus élevé.

Glycérides, acide gras


Réponses
Réponse 1 (Exercice 1)

acides gras saturés

Réponse 2 (Exercice 2)

acide octadécanoïque

Réponses 3 + 4 (Exercices 3+4)

triglycérides


Recherche rapide dans ce site et les sites liés de l'auteur (Fr, Ar, Eng) - :


Sciences et vie, Biochimie



Protéines et Enzymes, Baaziz 2013


Glossaire des sciences de la vie, trilingue (Fr, Ar, Eng) + Préparations Examens et contrôles S1, S2, S3 + DVD introductinon MOOC:

Sciences de la vie. Glossaire


indice iode


Réponses 7 (Exercices 7). Les différents lipides seront séparés selon le critère de polarité. Les lipides les plus apolaires migreront rapidement. Les phospholipides très polaires, ne migrent plus (restent au point de départ, Rf = 0). Les Monoglycérides polaires (deux OH), migrent peu (migration du bas vers le haut). Les Diglycérides et le Cholestérol libre migreront au milieu, au dessus des Monoglycérides, car ils sont moyennement polaires. Les acides gras très légèrement polaires migreront au milieu de la plaque, au dessus des Diglycérides. Etant apolaires, les Triglycérides migreront presque à l'extrémité de la plaque. Etant très apolaires, les esters du Cholestérol migreront avec le front du solvant. Voir le TP chromatographie sur couche mince des lipides (texte et vidéo).


Réponses 8 (Exercices 8).

- a/ Structure développée du lipide OLP:

lipide phosphatidyl-glycerol

-b/ Calcul de l'indice de saponification et de l'indice d'iode du lipide OLP :

1- Le poids moleculaire du lipide OLP : C18H34O2 = 282, C18H32O2 = 280, 2 x Glycerol = 92x2 = 184, H3PO4 = 98, 4xH2O = 72.

PM = (282+280+184+98) - 72 = 772.

Indice de saponification (avec 2 acides gras rentrant dans la saponification): Is = (m KOH*2 / PM)x 10^3. Donc, Is = 57*2*1000/772 = 147,66 mg/g de MG.

Indice d'iode : Ii = (mI2*delta/PM)* 100. Donc Ii= 127*2*3*100/772 = 98,7 g/100g de MG

c- Le resultat de l'hydrolyse de ce lipide par la phospholipase C : détachement du phosphoglycerol du lipide OLP.


Réponses 9 (Exercices 9). C'est l'acide gras (D) qui offre le meilleur rapport 'nombre de liaisons doubles/nombre de carbones' qui donnera l'indice d'iode le plus élevé.
Vidéos (Vidéos sur DVD avec explications dans le livre 'Science de la vie-Biochimie', Baaziz 2012, édité pour la préparation de la transition Secondaire-Supérieur (Ar --> Fr). Soutenir cette action par l'acquisition de cet ouvrage et en même temps appuyer la continuité des services gratuits rendus par le site takween.com au profits de tous les étudiants)

- Acides gras. Structure (narration en Arabe, titrage en Fr):


- Triglycérides, Phospholipides et Stéroïdes (narration en Arabe, titrage en Fr):

 

Thank you for reading article Acides gras, triglycérides

Wednesday, June 8, 2016

Sam Barros' CHEMLABS! Chemistry in action! - PowerLabs

Lab overview The more hazardous items are kept in a cupboard for added safety. The acids and bases come in large bottles; the brown ones are for light sensitive chemicals such as hydrogen peroxide and nitric acid, and the large heat resistant 1L graduated Schott Duran for Sulphuric. The smaller bottles (250, 100, and 50mL) contain chemicals that are not used frequently, are very expensive, or are too hazardous for mass storage (examples include mercury metal, sodium peroxide, phosphoric acid, arsenic, etc). Oxidizers and solids in general come in plastic bottles ranging from 25g to 1kilogram. The Hydrofluoric and Perchloric acid, and the distilled water all come in Teflon bottles. These feel like they are constantly covered in oil or butter, due to the extremely low coefficient of friction of PTFE.

Some assorted glassware. Some of the glassware includes Beakers (50, 100, 150, 250, 300, 400, 500, 600, 800, 1000mL, two of each), Erlenmyer flasks (2x 50, 2x100, 250, 1000mL), Filtration flasks (250 and 150mL), Test tubes (200x20mm and 15x10mm, 8 of each, all with accompanying rubber corks), glass balloons (100, 250mL), flat bottom flasks (50, 100, 150mL), buchner funnel, decanting flasks, glass funnels, hourglasses of assorted sizes (10), alumina ceramic mortar and pestle (250 and 600cc), glass pipettes (2x10, 25, 50 and 100mL), pipette pumps, titration pipette, thermometers (-10 to 250C mercury and 2 alcohol ones from -30 to 150C), pincers (3), scalpels (3), glass stirrers, boiling beads, metal spoons and spatulas, and many others. All this glassware was manufactured in Germany, and is "Duran", by Schott. This is the highest quality glassware I have ever seen, as it is even more heat resistant than Pyrex. I only managed to break one piece of glassware by thermal shock so far (the Sodium Peroxide experiment above shows how it happened). It also withstands impact better than regular glass, though I have always been extremely careful not to drop them because of their price (several times that of ordinary glassware).
 For the hydrofluoric acid experiments a 1L polyethylene beaker was obtained. It held up O.K. but became permanently stained; unfortunately Teflon beakers could not be obtained for the purpose of those experiments, even though they would be more appropriate.

Distillation apparatus and Vacuum Dissicator set up.Some of the more "advanced" equipment includes a 0 - 360C thermostat controlled hotplate (300W), a 50cm long serpentine glass condenser (both seen on the picture to the left, which show a distillation apparatus set up for the distillation of Nitric Acid. Not show in the apparatus is the venturi pump and vacuum line, which was necessary for reduced pressure distillation). The picture to the right shows a vacuum dissector. It consists in a 10L glass vessel weighting over 15kilograms, containing 2 kilos of Silica Gel in the bottom, and attached to a vacuum pump. A substance to be dried is placed inside the dissector and a vacuum is pulled inside it with the attached pump (in this picture a refrigerator pump is being used. This worked reasonably well and could dry most things within a couple of hours). As the water evaporates from the material it becomes trapped in the silica gel. Once the silica has become saturated (evidenced by it change of color from blue to pink, thanks to a cobalt indicator added to it) it needs to be heated at 150C for a couple of hours so it can once again perform its duty. This dissector greatly increased the speed of the procedures in the lab, making procedures that require multiple crystallizations take hours, as opposed to days. It was found that Silica can absorb most solvents almost as well as water, though it deteriorates quicker in doing so.

Two boxes full of chemicals.I was fortunate enough to find someone to buy my chemicals once I moved out of Sao Paulo and could not take them along with me to USA. Show to the left are two of the six boxes in which they were put. The box to the right contains fluorescein, and miscellaneous fuels. The box to the right contains mostly acids, from which I can identify 9litres of 99.8% analytical grade Sulphuric Acid, 10litres of 68% analytical grade Nitric Acid, and a half kilogram bottle of  Benzoyl Peroxide (stabilized by the addition of 20% water). There are also some oxidizers in the box.

  Chemical storage shelfs.
 Not shown also are all the safety equipment required for working with some of the hazardous chemicals above. These include an organic vapor-rated activated carbon filter gas mask, polycarbonate goggles, face shield, nitrile gloves, fume cupboard, fire extinguisher, earmuffs, and others.

 Questions? Comments? Suggestions? Don't hesitate to e-mail me!

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Last updated 11/02/10

Tuesday, June 7, 2016

Chemical compatibility guide - Watson-Marlow US

Always make an immersion test before choosing a tube material for critical applications. Immerse a short length of the tubing (always available from Watson-Marlow Fluid Technology or its distributors) in a closed container of the fluid for 48 hours, and then examine it for signs of attack, swelling, embrittlement or other deterioration.

*Important note - The ReNu Pumphead contains lubricant.   It is the users responsibility to comply with local health and safety regulations, including ensuring chemical compatibility between the lubricant and the duty fluid before use.   The standard lubricant is silicone oil.  A glycerol/glycol blend lubricant is also available as an option.  Contact your local Watson-Marlow representative for guidance.

*The information contained in the chemical compatibility guide is believed to be correct. Watson-Marlow Fluid Technology Group accepts no liability for any errors it contains. It is the users responsibility to ensure chemical compatibility within their application.

Rating legend

  • A Little to minor effect. Tubing: 0-5% volume swell
  • B Moderate effect. Tubing: 5% - 10% volume swell
  • C Severe effect. Tubing: 10% or greater volume swell
  • - No data available

Monday, June 6, 2016

__

 

     ar/500ml h2sif6
     ar/500ml  hf
     ar/100g c6h6o3
     ar/500 ml  c18h34o2

[ ]
» »
2016/4/9 14:44:18

http://product.11467.com/info/1749380.htm

40

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Sunday, June 5, 2016

Aceite De Cocina - Trabajos de investigación - Alezamm

Aceite de cocina

Nombre comercial: aceite oleico
Formula química:  Es un triglicérido insaturado. los componentes son un radical glicerilo (que viene de la glicerina o propanotriol, unalcóhol trivalente) al que van unidos tres radicales carboxilo insaturados, que generalmente se tratan de tres grupos de el ácido oleico o ácido Delta 9 octadecenoico.
Fórmula: C18H34O2
Es insoluble enagua
Composición de los aceites de oliva
El rendimiento de aceite de la aceituna es muy alto, dependiendo de la variedad, el porcentaje puede oscilar entre un 25 y un 30% de aceite en cadaaceituna. Las aceitunas poseen unglucósido que le proporciona un sabor amargo y que debe eliminarse mediante un macerado adecuado, en el caso del aceite de oliva este compuesto se elimina de forma naturaldurante el prensado en la almazara. De los componentes químicos que posee el aceite son en su mayoría ácidos grasos, como son el ácido oleico (casi un 75%), siendo el siguiente elácidopalmítico, ácido linoleico. El aceite de oliva posee una cantidad moderada de Vitamina E (principalmente -Tocoferol) y a pesar de poseer una baja cantidad de -Tocoferol el aceite de oliva es estable.8 Loscomponentes menores del aceite no se eliminan debido a que rara vez es refinado: escualenos, esteroles, alcoholes triterpenoides, clorofila,carotenoides .
* Otros componentes menores:
*Polifenoles: relacionados con el sabor del aceite
* Pigmentos clorofílicos y carotenoides: relacionados con el color que puede poseer el aceite.
* Compuestos volátiles: responsablesdel aroma del aceite.

Su fórmula química empírica es C18H34O2 (o bien, desarrollada, CH3(CH2)7CH=CH(CH2)7COOH).1 Su nombre IUPAC es ácidocis-9-octadecanoico, y su nombre de taquigrafía de lípido es18:1 cis-9 (también existe el isómero trans-9). La forma saturada de este ácido es el ácido esteárico.
El aceite de oliva comprende un 55-80% de ácido oleico y el aceite de semilla de uvas un...

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Saturday, June 4, 2016

- pirika

MOOC |

2012.9.22

13--9,11-(13-oxo-ODA:C18H30O3)

13-oxo-ODA

9.6g
C 68mg
B1 0.07mg
B2 0.04mg
B6 0.12mg
13mg  
E 0.9mg
4g
0.7mg
g
0.17mg

13-oxo-ODAWikiYMB

C
B1
B2
B6
E
K


13--9,11-(13-oxo-ODA)1,50095%50%20%10%10%5%


CCCCCCCCC=CCCCCCCCC(O)=O (C18H34O2)
CCCCCC=CCC=CCCCCCCCC(=O)O (C18H32O2)
EPADHA

CCC=CCC=CCC=CCC=CCC=CCCCC(=O)O, EPA5-20

DHA622 (22:6) 4, 7, 10, 13, 16, 19 DHA

CCCCCC(=O)C=CC=CCCCCCCCC(=O)O (13-oxo-ODA)
CCCCCCC=CC=CCCCCCCCC(=O)O

Rumenic acidbovinic acid(CLA)1313-oxo-ODA

HP

PKa(YMBCis/Trans

Trans30YMBCis/Trans

LDL2003WikiTrans

Carbon MP
2- 6 32
3- 6 12
4- 6 0
2- 16 45
7- 16 21
9-(cis) 16 0.5
6-(cis) 18 30
9-(cis) 18 13.4
11-(cis) 18 14.5
6-(trans) 18 54
9-(trans) 18 46.5
11-(trans) 18 44

2

2

Carbon# # of Double Bond MP
18 1 13.4
18 2 -5
- 18 3 -11
20 4 -49
,EPA 20 5 -54
, DHA 22 6 -44

13--9,11-(13-oxo-ODAYMB

Name Formula
acrylic acid C3H4O2
2-butenoic acid C4H6O2
cis-2-butenoic acid C4H6O2
trans-2-butenoic acid C4H6O2
vinylacetic acid C4H6O2
tiglic acid C5H8O2
trans-2-methyl-2-butenoic acid C5H8O2
3-methyl-2-butenoic acid C5H8O2
cis-2-methyl-2-butenoic acid C5H8O2
2-methyl-3-butenoic acid C5H8O2
4-pentenoic acid C5H8O2
cis-3-pentenoic acid C5H8O2
trans-3-pentenoic acid C5H8O2
cis-2-pentenoic acid C5H8O2
trans-2-pentenoic acid C5H8O2
(E,E)-sorbic acid C6 H8 O2
trans-2-Hexenoic acid C6H10O2
2-Methyl-2-pentenoic acid C6H10O2
4-methyl-3-pentenoic acid C6H10O2
(E)-2-hexenoic acid C6H10O2
2-methyl-4-pentenoic acid C6H10O2
(E)-3-hexenoic acid C6H10O2
(Z)-3-hexenoic acid C6H10O2
2-methyl-2-pentenoic acid C6H10O2
3-hexenoic acid C6H10O2
4-methyl-2-pentenoic acid C6H10O2
2-methyl-3-pentenoic acid C6H10O2
(E)-2-heptenoic acid C7H12O2
2-heptenoic acid C7H12O2
(E)-3-heptenoic acid C7H12O2
2-methyl-2-hexenoic acid C7H12O2
2,4-dimethyl-2-pentenoic acid C7H12O2
(E)-2,4-dimethyl-2-pentenoic acid  C7H12O2
3-octenoic acid C8H14O2
(E)-2-octenoic acid C8H14O2
(E)-3-octenoic acid C8H14O2
(E)-4-octenoic acid C8H14O2
(Z)-5-octenoic acid C8H14O2
2-nonenoic acid C9H16O2
3-nonenoic acid C9H16O2
(E)-2-nonenoic acid C9H16O2
geranic acid C10H16O2
(E)-2-decenoic acid C10H18O2
3,7-dimethyl-6-octenoic acid C10H18O2
2-decenoic acid C10H18O2
9-decenoic acid C10H18O2
3-decenoic acid C10 H18 O2
4-decenoic acid C10H18O2
5(6)-decenoic acid C10H18O2
5-decenoic acid C10 H18 O2
6-decenoic acid C10H18O2
10-undecenoic acid C11H20O2
11-dodecenoic acid C12H22O2
(E)-2-tridecenoic acid C13H24O2
Linolenic acid C18H30O2
linoleic acid C18H32O2
Elaidic acid C18H34O2
oleic acid C18H34O2
Erucic acid C22H42O2
Brassidic acid C22H42O2
22-Tricosenoic_acid C23H44O2

Cis/Trans

Antoine

/logP, logKow

log() g/100glogS13-oxo-ODA

87%7%3%3%

2012.10.1

1302YMB

YMB4heat of Formation()5

4521.31Kcal/mol18.5kcal/mol1mol72.062YMB33.4cal/molK34.3100mol1mol6.386014314513mol8.54Kcal/mol=1.051mol72cc4301000YMB613K615K100041241255mol 324K11204129029270m360333.4cal/molK160000000(g)*0.464(cal/gK)*292()/90(min)=90325Kcal10.52510075*1(cal/gK)11204kg10cm220m/s101500-600L

2011

 

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Friday, June 3, 2016

Mole, moles to grams Conversion -- EndMemo

(C2H5)2O
Ether(NH4)2C2O4
Ammonium Oxalate(NH4)2CO3
Ammonium Carbonate(NH4)2CrO4
Ammonium Chromate(NH4)2HPO4
Di-Ammonium Phosphate(NH4)2S
Ammonium Sulfide(NH4)2SO4
Ammonium Sulfate(NH4)3PO3
Ammonium Phosphite(NH4)3PO4
Ammonium PhosphateAg2O
Silver(I) OxideAg2S
Silver SulfideAg2SO4
Silver SulfateAgBr
Silver BromideAgCh3COO
Silver AcetateAgCl
Silver ChlorideAgF
Silver(I) FluorideAgNO3
Silver NitrateAl(NO3)3
Aluminium NitrateAl(OH)3
Aluminium HydroxideAl2(CO3)3
Aluminum CarbonateAl2(CrO4)3
Aluminum ChromateAl2(SO4)3
Aluminium SulfateAl2O3
Aluminium OxideAl2S3
Aluminum SulfideAlBr3
Aluminum BromideAlCl3
Aluminium ChlorideAlF3
Aluminium FluorideAlI3
Aluminum IodideAs2O3
Arsenic Trioxide (Arsenic(III) Oxide)AsCl3
Arsenic TrichlorideAuCl3
Gold(III) ChlorideB2H6
DiboraneB2O3
Boron OxideB5H9
PentaboraneBa(NO3)2
Barium NitrateBa(OH)2
Barium HydroxideBaCl2
Barium ChlorideBaCO3
Barium CarbonateBaI2
Barium IodideBaO
Barium OxideBaO2
Barium PeroxideBaSO4
Barium SulfateBBr3
Boron TribromideBCl3
Boron TrichlorideBeCl2
Beryllium ChlorideBeI2
Beryllium IodideBF3
Boron TrifluorideBr2
Bromine GasC10H14N2
NicotineC10H14O
CarvoneC10H15NO
EphedrineC10H8
NaphthaleneC12H22O11
MaltoseC13H18O2
IbuprofenC14H10O2
BenzilC14H18N2O5
AspartameC15H22ClNO2
Ethyl 1-methyl-4-phenylpiperidine-4-carboxylateC18H34O2
Oleic AcidC27H46O
CholesterolC2H2
AcetyleneC2H3NO
Methyl IsocyanateC2H4
EtheneC2H4Cl2
1,2-DichloroethaneC2H4O
Ethylene OxideC2H5Cl
Ethyl ChlorideC2H6
EthaneC2H6O
EthanolC2H6O2
Ethylene GlycolC33H30N4O2
TelmisartanC3H6
PropeneC3H6O
PropionaldehydeC3H6O3
Lactic AcidC3H7OH
PropanolC3H8
PropaneC3H8O
Glycerin C3H8O3
GlycerinC4H10
ButaneC4H10O
Diethyl EtherC4H2O3
Maleic AnhydrideC4H6
1,3-ButadieneC4H6O3
Acetic AnhydrideC4H8
2-Methylpropene C4H8O
Tetrahydrofuran C4H8O2
Ethyl AcetateC4H9OH
Butyl AlcoholC5H10
CyclopentaneC5H10O5
RiboseC5H12
PentaneC5H12O
Methyl Tert-butyl Ether C6H10OS2
AllicinC6H12
CyclohexaneC6H12O
Cis-3-Hexen-1-olC6H12O6
GalactoseC6H14
HexaneC6H4Cl2
P-DichlorobenzeneC6H5Br
BromobenzeneC6H5NO2
Vitamin B3C6H6
BenzeneC6H8O6
Vitamin CC6H8O7
Citric AcidC7H5NO3S
SaccharinC7H6O
BenzaldehydeC7H6O2
Benzoic AcidC7H6O3
Vitamin SC7H8
CycloheptatrieneC8H10
XyleneC8H10N4O2
CaffeineC8H18
2,2,4-Trimethylpentane C8H8
StyreneC8H8O3
VanillinC8H9NO2
AcetaminophenC9H20
NonaneC9H8O4
Acetylsalicylic Acid Ca(C2H3O2)2
Calcium AcetateCa(HCO3)2
Calcium BicarbonateCa(NO3)2
Calcium NitrateCa(OH)2
Calcium HydroxideCa3(PO3)2
Calcium PhosphateCa3(PO4)2
Tricalcium PhosphateCa3N2
Calcium NitrideCaBr2
Calcium BromideCaC2
Calcium CarbideCaCl2
Calcium ChlorideCaCO3
Calcium CarbonateCaF2
Calcium FluorideCaH2
Calcium HydrideCaI2
Calcium DiiodideCaO
Calcium OxideCaS
Calcium SulfideCaSO4
Calcium Sulfate CBr4
Carbon TetrabromideCCl2F2
DichlorodifluoromethaneCCl4
Carbon TetrachlorideCd(NO3)2
Cadmium NitrateCdS
Cadmium SulfideCF4
Carbon TetrafluorideCH2Cl2
DichloromethaneCH2O
FormaldehydeCH2O2
Formic AcidCH3COOH
Acetic AcidCH4
MethaneCH4O
MethanolCHCl3
ChloroformCl2
Chlorine GasClO2
Chlorine DioxideCo(NO3)2
Cobalt(II) NitriteCO2
Carbon DioxideCoCl2
Cobalt(II) ChlorideCOCl2
PhosgeneCoSO4
Cobalt(II) SulfateCr(OH)3
Chromium HydroxideCr2O3
Chromium(III) OxideCrCl3
Chromium(III) ChlorideCS2
Carbon DisulfideCsCl
Caesium ChlorideCu(CN)2
Copper(II) CyanideCu(NO3)2
Copper(II) NitrateCu(OH)2
Copper(II) HydroxideCu2O
Copper(I) OxideCu2S
Copper(I) SulfideCu3(PO4)2
Copper(II) PhosphateCuBr
Copper(I) BromideCuCl
Copper(I) ChlorideCuCl2
Copper(II) ChlorideCuCO3
Copper(II) CarbonateCuFeS2
ChalcopyriteCuI
Copper(I) IodideCuNO3
Copper(I) NitrateCuO
Copper(II) OxideCuS
Copper(II) SulfideCuSO4
Copper(II) SulfateCuSO4.5H2O
Copper(II) Sulfate PentahydrateFe(NO3)2
Iron(ii) NitrateFe(OH)3
Iron(III) HydroxideFe2(CO3)3
Iron(III) CarbonateFe2(SO4)3
Iron(III) SulfateFe2O3
Iron(III) OxideFe2S3
Iron(III) SulfideFe3O4
Iron(II,III) OxideFeBr3
Iron(III) BromideFeCl2
Iron(II) ChlorideFeCl3
Iron(III) ChlorideFeF3
Iron(III) FluorideFeO
Iron(II) OxideFePO4
Iron(II) PhosphateFeS
Iron(ii) SulfideFeSO4
Iron(II) SulfateGa2(SO3)3
Gallium SulfiteH2CO3
Carbonic AcidH2O
WaterH2O2
Hydrogen PeroxideH2S
SulfaneH2SO3
Sulfurous AcidH2SO4
Sulfuric AcidH3BO3
Boric AcidH3PO2
Hypophosphorous AcidH3PO3
Phosphorous Acid (Phosphoric(III) Acid)H3PO4
Phosphoric AcidHBr
Hydrobromic AcidHCl
Hydrogen ChlorideHClO4
Perchloric AcidHCN
Cyanic AcidHg(NO3)2
Mercury(II) NitrateHgCl2
Mercury(II) ChlorideHgO
Mercury(II) OxideHgS
Mercury(II) SulfideHNO2
Nitrous AcidHNO3
Nitric AcidK2C2O4
Potassium OxalateK2CO3
Potassium CarbonateK2Cr2O7
Potassium DichromateK2CrO4
Potassium ChromateK2HPO4
Potassium Hydrogen PhosphateK2O
Potassium OxideK2S
Potassium SulfideK2SO4
Potassium SulfateK3PO4
Tripotassium PhosphateKAl(SO4)2
Aluminum Potassium SulfateKBr
Potassium BromideKCl
Potassium ChlorideKClO2
Potassium ChloriteKClO3
Potassium ChlorateKClO4
Potassium PerchlorateKCN
Potassium CyanideKH2PO4
Monopotassium PhosphateKHC8H4O4
Potassium Hydrogen PhthalateKHCO3
Potassium HydrogencarbonateKIO3
Potassium IodateKMnO4
Potassium PermanganateKNO3
Potassium NitrateKOH
Potassium HydroxideKrF2
Krypton DifluorideKSCN
Potassium ThiocyanateLi2CO3
Lithium Carbonate Li2O
Lithium OxideLi2SO4
Lithium SulfateLi3N
Lithium NitrideLi3PO4
Lithium PhosphateLiBr
Lithium BromideLiCl
Lithium ChlorideLiF
Lithium FluorideLiH
Lithium HydrideLiNO3
Lithium NitrateLiOH
Lithium HydroxideMg(CH3COO)2
Magnesium AcetateMg(HCO3)2
Magnesium BicarbonateMg(NO3)2
Magnesium NitrateMg(OH)2
Magnesium HydroxideMg3(PO4)2
Magnesium PhosphateMg3N2
Magnesium NitrideMgBr2
Magnesium BromideMgCl2
Magnesium ChlorideMgCO3
Magnesium CarbonateMgF2
Magnesium FluorideMgO
Magnesium OxideMgS
Magnesium SulfideMgSO4
Magnesium SulfateMn2Se7
Manganese(VII) SelenideMnCl2
Manganese(II) ChlorideMnI2
Manganese(II) IodideMnO2
Manganese(IV) Oxide MnSO4
Manganese SulfateN2F2
Dinitrogen DifluorideN2F4
TetrafluorohydrazineN2H4
HydrazineN2I6
Dinitrogen HexaiodideN2O
Nitrous OxideN2O2
Dinitrogen DioxideN2O3
Dinitrogen TrioxideN2O4
Dinitrogen TetroxideN2O5
Dinitrogen Pentoxide Na2CO3
Sodium CarbonateNa2O
Sodium OxideNa2O2
Sodium PeroxideNa2S
Sodium SulfideNa2S2O3
Sodium ThiosulphateNa2SO3
Sodium SulfiteNa2SO4
Sodium SulfateNa3PO4
Trisodium PhosphateNaBH4
Sodium BorohydrideNaBr
Sodium BromideNaCH3COO
Sodium AcetateNaCl
Sodium ChlorideNaClO3
Sodium ChlorateNaClO4
Sodium PerchlorateNaF
Sodium Fluorine NaH
Sodium HydrideNaH2PO4
Sodium Dihydrogen PhosphateNaHCO3
Baking SodaNaI
Sodium IodideNaIO3
Sodium IodateNaNO2
Sodium NitriteNaNO3
Sodium NitrateNaOH
Sodium HydroxideNF3
Nitrogen TrifluorideNH3
AmmoniaNH4Br
Ammonium BromideNH4Cl
Ammonium ChlorideNH4NO2
Ammonium NitriteNH4NO3
Ammonium NitrateNH4OH
Ammonium HydroxideNi(NO3)2
Nickel(II) NitrateNI3
Nitrogen TriiodideNiBr2
Nickel BromideNiCl2
Nickel(II) ChlorideNiO
Nickel(II) OxideNiSO4
Nickel SulfateNO2
Nitrogen DioxideNO3
Nitrate IonOF2
Oxygen DifluorideP2O3
Diphosphorus TrioxideP2O5
Phosphorus PentoxideP4O10
Phophorus PentoxideP4S3
Phosphorus SesquisulfidePb(C2H3O2)2
Lead(II) AcetatePb(C2H3O2)4
Lead(IV) AcetatePb(NO3)2
Lead(II) NitratePbCl2
Lead(II) ChloridePbCl4
Lead(IV) ChloridePbCrO4
Lead(II) ChromatePbI2
Lead(II) IodidePbO
Lead(II) OxidePbO2
Lead(IV) OxidePBr3
Phosphorus TribromidePbS
Lead(II) SulfidePCl3
Phosphorus TrichloridePCl5
Phosphorus PentachloridePF3
Phosphorus TrifluoridePH3
PhosphinePI3
Phosphorus TriiodidePt(NH3)2Cl2
DiamminedichloroplatinumRa(OH)2
Radium HydroxideRbOH
Rubidium HydroxideS2F10
Sulfur FluorideSbCl3
Antimony TriclorideSCl6
Sulfur HexachlorideSF4
Sulfur TetrafluorideSF6
Sulfur HexafluorideSiH4
SilaneSiO2
Silicon DioxideSiO2
QuartzSnCl4
Tin(IV) ChlorideSnF4
Stannic FluorideSnO2
Tin DioxideSO2
Sulfur DioxideSO3
Sulfur TrioxideSO4
Sulfate IonSOCl2
Thionyl ChlorideSr(NO3)2
Strontium NitrateSrCl2
Strontium ChlorideTiO2
Titanium Dioxide (titanium(IV) Oxide)UF6
Uranium HexafluorideV2O5
Vanadium(V) OxideXeF6
Xenon HexafluorideZn(C2H3O2)2
Zinc AcetateZn(NO3)2
Zinc NitrateZn(OH)2
Zinc HydroxideZnCl2
Zinc ChlorideZnCO3
Zinc CarbonateZnI2
Zinc IodideZnO
Zinc OxideZnSO4
Zinc Sulfate
Thank you for reading article Mole, moles to grams Conversion -- EndMemo